Интернет аптека Lovetab.net

Изучение биохимических свойств выделенных бактерий

Изучение биохимических свойств выделенных бактерий является основным этапом их идентификации.

Для идентификации энтеробактерий предложено свыше 100 биохимических тестов. Сотрудники Международного комитета по энтеробактериям отобрали более 30 из них, позволяющих определять родовую принадлежность бактерий внутри семейства.

Ввиду трудоемкости таких исследований многие авторы стремились ограничить выбор диагностических тестов до минимума.

Для дифференциации бактерий по группам — Shigella-Escherichia, Salmonella-Arizona-Citrobacter-, – Klebsiel-la-Enterobacter-Serratia-, – Proteus — Providencia —, no данным некоторых авторов, достаточно 9 тестов. Это тесты разложения глюкозы, лактозы, дульцитола, образования индола, сероводорода, уреазы, фенилалашшдезаминазы, лизиндекарбоксилазы, роста на цитратной среде Симмонса, которые отличаются между собой для указанных групп бактерий (Edwards и Ewing, 1962).

Ряд авторов для первичной идентификации применяют минимальное количество тестов: Traub и соавторы (1970) и Greaves (1970) — 5, Closs (1971) — 4 теста. Closs всего 4 тестами дифференцирует быстро сбраживающие лактозу бактерии 4 родов — Escherichia, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter: образование сероводорода, определение подвижности, продукция орнитиндекарбоксилазы и способность к росту на цитратной среде.

Другие авторы используют большое количество биохимических тестов (Whitfield, 1967; Belliveau и др., 1968; Graevenitz, 1971).

В. Г. Финн и В. И. Чаус (1976) пытались путем математического исследования с помощью электронно-вычислительной машины определить последовательность проб в наборах биохимических тестов, предлагаемых для идентификации представителей семейства энтеробактерий. Для первоначальной идентификации авторы рекомендуют набор из 7 тестов — ферментацию глюкозы с образованием газа, лактозы, образование сероводорода, разложение желатина, инозита, арабинозы, утилизацию цитрата на среде Симмонса, и для дополнительной идентификации — набор из 6 тестов — реакцию с метиловым красным, с глютаминовой кислотой, ацетатной средой, ксилозой, мальтозой и глицерином.

Предложен агар с бромтимоловым красителем, содержащий цистеин, лактозу и электролиты, на котором тормозится рост роящихся культур протеев, но обеспечивается оптимальный рост возможным другим возбудителям инфекции мочевых органов (Breitfellner, 1972). На этом агаре лактозоположительные штаммы кишечной палочки растут в виде желтых прозрачных колоний с темным центром, а лактозоотрицательные — голубых; клебсиелла — в виде колоний желто-белых до бело-голубого цвета с большим количеством слизи; протеи дают голубой прозрачный рост с отсутствием роения; сальмонелла — плоские голубые колонии; синегнойная палочка — зеленые матовые шероховатые; энтерококк — желтоватые мелкие колонии (0,5 мм); золотистый стафилококк — равномерно темно-желтые (0,75 мм); эпидермальный стафилококк — бледно-желтые или белые непрозрачные с более бледной периферией; коринебактерии — очень мелкие серые колонии.

Вся информация на сайте несёт сугубо ознакомительный характер. Прежде чем заниматься самолечением, мы рекомендуем вам проконсультироваться с вашим врачом.

Свежие публикации